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JUNIO  2018

CICLO 141

SALMONELOSIS

Se conoce como salmonelosis al grupo de infecciones producidas por bacilos del género Salmonella, las cuales se adquieren por la ingesta de alimentos o bebidas contaminados.


Se asocian a síndromes febriles y manifestaciones gastrointestinales o sistémicas.

Se han identificado más de 2500 serotipos of Salmonella en una gran diversidad de nichos ecológicos. Una gran parte de las infecciones en el humano es ocasionada por Salmonella enterica,

causante de infección intestinal aguda en personas de todos los grupos etarios, y que puede dar lugar a infecciones invasivas graves en lactantes, ancianos y pacientes inmunosuprimidos.

La clasificación más reciente de Salmonella, basada en la secuenciación de DNA, considera solamente 2 especies: S. enteritica yS. bongori, subdivididas en subespecies and serovares. 

S. enteritica serotipo typhi aún se identifica en algunos textos como S. typhi, aunque no sea el término apropiado.

Clasificación clínica y serológica de especies patógenas de Salmonella. Ejemplo.
ClínicaSerotipoNombreSerogrupo
TifoídicaTyphiSalmonella enterica, subsp. enterica, serotipo TyphiD
 Paratyphi AS. enterica, subsp. enterica, serovar Paratyphi AA
 Paratyphi BS. enterica, subsp. enterica, serovar Paratyphi BB
 Paratyphi CS. enterica, subsp. enterica, serovar Paratyphi CC
No-tifoídicaTyphimuriumS. enterica, subsp. enterica, serovar TyphimuriumB
 EnteritidisS. enterica, subsp. enterica, serovar EnteritidisD
 NewportS. enterica, subsp. enterica, serovar NewportC
Modificado de: Hunter's tropical medicine and Emerging Infectious Diseases. 9th ed. Philadelphia: Saunders, 2013. (Ninth Edition)

La fiebre tifoidea es una infección sistémica causada por Salmonella enteritica serovar typhi (S. typhi), la causa más común de fiebre entérica, que también incluye a la fiebre paratifoidea, ocasionada por S. paratyphi A, B y C.

Los serotipos de Salmonella typhi y paratyphi son patógenos comunes en países en desarrollo. 

Vínculos.

- Crump JA, Sjölund-Karlsson M, Gordon MA, Parry CM. Epidemiology, Clinical Presentation, Laboratory Diagnosis, Antimicrobial Resistance, and Antimicrobial Management of Invasive Salmonella Infections. Clin Microbiol Rev. 2015 Oct;28(4):901-37. doi: 10.1128/CMR.00002-15. 
- John L Brusch. Typhoid Fever Treatment & Medication. Medscape. Actualización 2015.
- 
Wain J, Hendriksen RS, Mikoleit ML, Keddy KH, Ochiai RL. Typhoid fever. Lancet. 2015 Mar 21;385(9973):1136-45. 
doi: 10.1016/S0140-6736(13)62708-7.
- Guía de Referencia Rápida. Diagnóstico y Tratamiento para la Fiebre Tifoidea. Guía de Práctica Clínica. CENETEC. SSA. Número de Registro: IMSS-259-10 El documento no incluye fecha de publicación.
- 
Aboutaleb N, Kuijper EJ, Van Dissel JT. Emerging infectious colitis. Current Opinion in Gastroenterology. 2014; 94(13):2758-2765.
Los brotes epidémicos de infecciones intestinales causados por Salmonella spp., Campylobacter spp., Escherichia coli productora de Shiga toxina (STEC) constituyen un riesgo con nuevos hallazgos en epidemiología y características de virulencia. 
- Guerrant RL, DeBoer MD, Moore SR, Scharf RJ, Lima AA. The impoverished gut--a triple burden of diarrhoea, stunting and chronic disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2013 Apr;10(4):220-9. doi: 10.1038/nrgastro.2012.239. 
- 
Ajene AN, Fischer Walker CL, Black RE. Enteric pathogens and reactive arthritis: a systematic review of Campylobacter, salmonella and Shigella-associated reactive arthritis. J Health Popul Nutr. 2013 Sep;31(3):299-307.
- Ross AG, Olds GR, Cripps AW, Farrar JJ, McManus DP. Enteropathogens and chronic illness in returning travelers. N Engl J Med. 2013 May 9;368(19):1817-25. doi: 10.1056/NEJMra1207777. 
- Perez-Montaño JA, Gonzalez-Aguilar D, Barba J, ; Pacheco-Gallardo C, Campos-Bravo CA, Garcia S, Heredia N, Cabrera-Diaz E. Frequency and Antimicrobial Resistance of Salmonella Serotypes on Beef Carcasses at Small Abattoirs in Jalisco State, Mexico. Journal of Food Protection, May 2012;75(5):867-873. (Únicamente resumen. Solicitar).
- Carrillo-Inungaray ML, Mondragón-Hernández FM. Estudio de vida útil del queso asadero. Julio-Septiembre 2011;12(3). Útil en cualquier contexto. Tipos de organismos y la Norma en México. 
- Newell DG, Koopmans M, Verhoef L, Duizer E, Aidara-Kane A, Sprong H, et al. Food-borne diseases — The challenges of 20 years ago still persist while new ones continue to emerge. Int J Food Microbiol, 30 May 2010;139, Suppl:S3-S15. Para revisar infecciones causadas por alimentos.
- Jurado Jiménez R, Arenas Muñoz C, Doblas Delgado A, Rivero A, Torre-Cisneros J. Fiebre tifoidea y otras infecciones por salmonellas. Medicine. 2010;10:3497-501.
- Puerta-García A, Mateos-Rodríguez F. Enterobacterias. Medicine. 2010;10:3426-31.
- Miranda JM, Mondragon AC, Martinez B, Guarddon M, Rodriguez JA. Prevalence and antimicrobial resistance patterns of Salmonella from different raw foods in Mexico. Journal of Food Protection 2009;72 (5), pp. 966-971. (Solamente resumen). 
- Gutiérrez Castillo AC, Paasch Martínez LH, Calderón Apodaca NL. Salmonelosis y campilobacteriosis, las zoonosis emergentes de mayor expansión en el mundo. Vet Méx. 2008 Mar; 39(1): 81-90. 
- John N. Sofos. Challenges to meat safety in the 21st century. Meat Science, Jan-Feb 2008;78(1-2):3-13. Sobre la importancia de la contaminación de carnes con patógenos (E. coli, Salmonella, Campylobacter, virus, protozoos, medidas de control, entre otros).

 

ATCC14028

Salmonella  typhimurium

100%

NUMERO DE LABORATORIOS

212

100%

TINCION DE GRAM

% EN EL GRUPO CONTROL

BACILOS

210

99%

GRAM NEGATIVO

210

99%

COCOS

2

0.9%

GRAM POSITIVO

2

0.9%

LEVADURAS

1

0.5%

AISLAMIENTO

212

% EN EL GRUPO CONTROL

Salmonella spp

108

51%

Salmonella enterica

75

35%

Salmonella  typhimurium

12

6%

Salmonella  paratyphi

5

2%

Salmonella  typhi

5

2%

Salmonella  cholerasuis

4

2%

Citrobacter freundi

1

0%

Shigella spp

1

0%

Sphingomonas paucimobilis

1

0%

TAXONOMIA BASICA

NUMERO

% EN EL GRUPO CONTROL

SULFHIDRICO

210

100%

MOTILIDAD

194

92%

ANAEROBIOSIS FACULTATIVA

187

89%

REDUCCION DE NITRITOS

141

67%

CATALASA

144

68%

FERMENTACION DE LACTOSA

21

10%

OXIDASA

14

7%

UREASA

18

9%

HEMOLISIS

0

0%

ANTIBIOGRAMA

NUMERO

% SENSIBLE EN EL GRUPO CONTROL

TRIM SULFA

212

100%

AMPICILINA

205

97%

CIPROFLOXACINA

198

94%

NITROFURANTOINA

153

72%

IMIPENEM

114

54%

CEFOTAXIMA

89

42%

LEVOFLOXACINA

81

38%

TETRACICLINA

50

24%

CEFALOSPORINAS

51

24%

AMOXICILINA

44

21%

CLORAMFENICOL

34

16%

GENTAMICINA

35

16%

AMIKACINA

32

15%

NORFLOXACINA

21

10%

AZITROMICINA

19

9%

PENICILINA

17

8%

ERITROMICINA

11

5%

CARBENICILINA

12

6%

CLINDAMICINA

6

3%

METICILINA

5

2%

VANCOMICINA

5

2%

RESISTENTE A TETRACICLINA, AMINOGLICOSIDOS, MACROLIDOS, CLORANFENICOL Y PENICILINA

    

salmonella.jpg

 

2018

N

136

137

138

139

140

141

224

229

235

219

233

216

212

2018

ENE

FEB

MAR

ABR

MAY

JUN

BACILOS

67%

1

1

1

1

GRAM NEGATIVO

67%

1

1

1

1

COCOS

17%

1

GRAM POSITIVO

17%

1

LEVADURAS

17%

1

AISLAMIENTO

GENERO

Klebsiella 

Shigella

Cándida

Pseudomonas

Staphylococcus

Salmonella

ESPECIE

oxytoca

sonnei

tropicalis

aeruginosa

aureus BLEA

typhimurium

TAXONOMIA BASICA

% POSITIVO

ANAEROBIOSIS FACULTATIVA

100%

100%

100%

27%

21%

74%

89%

NITRITOS

100%

83%

72%

0%

47%

100%

67%

CATALASA 

83%

87%

17%

65%

100%

68%

MOTILIDAD

83%

66%

20%

0%

84%

92%

FERMENTACION DE LACTOSA

67%

67%

63%

0%

43%

HEMOLISIS

33%

51%

79%

ESPORAS

17%

14%

OXIDASA 

17%

100%

SULFHIDRICO

17%

100%

UREASA 

17%

38%

ANTIBIOGRAMA

> 20% SENSIBLE

CIPROFLOXACINA

100%

100%

100%

99%

89%

94%

LEVOFLOXACINA

100%

37%

49%

39%

88%

38%

IMIPENEM

80%

50%

52%

38%

54%

NITROFURANTOINA

80%

62%

69%

74%

72%

TETRACICLINA

80%

28%

29%

86%

24%

TRIMETOPRIM SULFAMTXSL

80%

97%

97%

100%

100%

AMPICILINA

60%

2%

95%

97%

GENTAMICINA

60%

99%

97%

80%

AMIKACINA

40%

93%

100%

CEFALOSPORINAS 1a GEN

40%

24%

24%

CEFOTAXIMA

40%

39%

42%

CLINDAMICINA

20%

93%

ERITROMICINA

20%

91%

PENICILINA

20%

30%

VANCOMICINA

20%

94%

 

2017

CICLOS

124

125

126

127

128

129

130

131

132

133

134

135

N=2094

121

179

152

189

162

161

185

216

162

194

204

169

2017

ENE

FEB

MAR

ABR

MAY

JUN

JUL

AGO

SEP

OCT

NOV

DIC

GRAM NEGATIVO

67%

1

1

1

1

1

1

1

1

BACILOS

67%

1

1

1

1

1

1

1

1

COCOS

25%

1

1

1

GRAM POSITIVO

25%

1

1

1

LEVADURAS

8%

1

AISLAMIENTO

GENERO

Staphylococcus 

Pseudomonas

Candida

Enterobacter

Salmonella

Citrobacter

Proteus

Control 

Enterococcus

Serratia

Escherichia

 Staphylococcus epidermidis

ESPECIE

aureus ( BLEA)

aeruginosa

albicans

aerogenes

typhi

freundii

mirabilis

Negativo

faecalis

marscencens

coli

Stenotrophomonas maltophila

TAXONOMIA BASICA

% POSITIVO

ANAEROBIOSIS FACULTATIVA

100%

73%

66%

40%

94%

97%

71%

86%

100%

93%

83%

41%

CATALASA 

91%

99%

64%

65%

92%

66%

56%

69%

70%

64%

51%

NITRITOS

73%

29%

76%

62%

79%

65%

71%

95%

28%

FERMENTACION DE LACTOSA

64%

35%

26%

100%

100%

38%

47%

100%

MOTILIDAD

64%

83%

88%

100%

87%

100%

100%

84%

HEMOLISIS

45%

69%

51%

27%

90%

26%

SULFHIDRICO

36%

89%

73%

84%

93%

UREASA 

36%

25%

65%

95%

85%

OXIDASA 

36%

100%

75%

74%

20%

COAGULASA

9%

100%

ESPORAS

9%

100%

ANTIBIOGRAMA

> 20% SENSIBLE

CIPROFLOXACINA

100%

98%

96%

100%

94%

100%

100%

96%

99%

100%

36%

LEVOFLOXACINA

100%

93%

41%

45%

36%

40%

51%

81%

42%

37%

55%

GENTAMICINA

80%

89%

100%

99%

95%

98%

100%

98%

31%

TRIMETOPRIM SULFAMTXSL

80%

100%

100%

100%

91%

96%

95%

95%

100%

IMIPENEM

70%

46%

46%

50%

48%

47%

48%

54%

AMIKACINA

60%

97%

98%

89%

92%

95%

96%

CEFOTAXIMA

60%

34%

44%

34%

33%

32%

20%

NITROFURANTOINA

60%

77%

37%

68%

59%

70%

64%

TETRACICLINA

40%

91%

20%

93%

22%

VANCOMICINA

30%

92%

47%

29%

AMPICILINA

20%

95%

100%

CEFALOSPORINAS 1a GEN

20%

26%

24%

               

UTILIZAR CONTROLES NEGATIVOS DURANTE LA RONDA ANUAL PERMITE VALORAR

LA SENSIBILIDAD Y ESPECIFICIDAD DE LAS PRUEBAS

FALSOS ( + ) Y FALSOS ( - )

 

INSTRUCCIONES PARA EL MANEJO DE LOS CONTROLES

FOR SGC 31
VERSIÓN 5.1
oct-16
PROGRAMABACTERIOLOGÍA
PRUEBAGram. Taxonomía y Antibiograma
REACTIVOResiembra estabilizada de Cepas ATCC, en un medio semisólido con nutrientes adecuados a la cepa.
FECHA DE ESTUDIO           Analizar al día siguiente de recibir los controles,   reporte resultados al terminar el proceso
ESTABILIDADEste reactivo se puede enviar a temperatura ambiente ( 25 +/- 10 ºC) No debe llegar congelado.
 Tres días a temperatura ambiente. Dos meses si se conserva 5 +/- 3 °c.    
MANEJOEl control debe recibir un tratamiento similar al de las muestras de líquidos orgánicos supuestamente 
 estériles: LCR, Hemocultivo, Ascitis, Pleura, Sinovial, etc. 
PRE-ANALÍTICO1.- Dejarlo reposar a temperatura ambiente durante 15 minutos.
 2.- Adicionar 0.5 ml de solución salina esteril.  
 3.- Homogeneizar la muestra durante otros 15 minutos
 4.- Invertir el vial en forma manual por 5 veces. 
 5.- Sembrar en los medios en BHI y Tripticasa Soya ( Ruiz Castañeda)
 6.- Incubar 24 hrs. a 35 grados C. 
ANALÍTICOProcesar conforme a las rutinas para microorganismos fastidiosos. 
CONFIDENCIALIDAD1.- Trasvasar la muestra a un vial idéntico al que utiliza en la rutina de trabajo incluyendo 
 contenedores, etiquetas, código de barras y un pseudónimo 
 2.- Manejar la muestra como si se tratara de una muestra de paciente.
HOJA DE TRABAJOObtenga la hoja de trabajo  www.qualitat.cc
REPORTE DIRECTOEnvíe sus resultados a través de www.i-qualitat.net utilizando sus claves y códigos confidenciales
REPORTE VÍA MAILEnvíe sus resultados en formato Excel a resultados@qualitat.cc cuando tenga algún problema en el website 

  
 PRONTUARIO DE BACTERIOLOGIA 

 CUADRO ROJO < >

 http://edicion-micro.usal.es/web/identificacion/AyudaPruebas.html 
  

DIAGNOSTICO MICROBIOLOGICO. REV MEX PAT CLIN. 2002

MANUAL DE BACTERIOLOGIA CLINICA

TAXONOMIA BACTERIANA

APUA.JPG

EUCAST.JPG

COESANT.JPG

GUIA PARA LA TERAPIA ANTIMICROBIANA V 2.0: 2008

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BACTERIEMIA POLIMICROBIANA: DILEMA BACTERIOLOGICO.

El laboratorio de bacteriología eventualmente puede enfrentar un dilema diagnostico al encontrar que en la Tincion de Gram

encuentra la presencia de Bacilos Gram Negativos además de Cocos Gram Positivos.

En estas condiciones, existen varias opciones posibles.

1. Solicitar una nueva muestra ya que la presencia de ambos microrganismos indica que la muestra esta contaminada y no es posible realizar el estudio.

2. Estudiar la bacteria mas abundante ( Cocos Gram Positivos ) aun cuando se encuentre una cepa saprofita e informar los resultados.

3. Estudiar la bacteria que potencialmente es mas patógena  ( Bacilos Gram Negativos ) e informar los resultados.

4. Estudiar ambas bacterias (CGP , BGN ) e informar los resultados de ambos microrganismos.

5. Conversar con el médico tratante para que entre ambos se tomen la decisión sobre la conducta a seguir.

La decisión se debe fundamentar desde el punto de vista médico desde la perspectiva de las implicaciones potenciales en el paciente.

Calidad en Medicina es proporcionar al paciente el máximo beneficio (efectividad) , el menor riesgo (eficiencia) y al mejor costo (eficacia).

 

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